Сбор диагностического материала. Режимы и кратность обследования больных

Важным этапом в диагностике туберкулёза является бактериологическое лабораторное исследование бронхо-лёгочного материала. Самый простой для получения биоматериал – мокрота. Необходимо помнить, что любое лабораторное исследование это сложный и многостадийный процесс, результативность которого зависит от многих факторов. Очень важным является преаналитический этап,  на котором осуществляются сбор биоматериала и оформление сопроводительных документов для лаборатории. Именно на этом этапе организованное взаимодействие медицинских работников и пациента во многом повышает эффективность проведения самого лабораторного исследования.   

ДИАГНОСТИЧЕСКИЙ МАТЕРИАЛ

 Сбор диагностического материала        

Режимы и кратность обследования больных

Кратность и сроки микробиологических исследований в ходе лечения и наблюдения различных групп пациентов определены в инструкции по химиотерапии больных туберкулезом и инструкции по организации диспансерного наблюдения и учету контингентов противотуберкулезных учреждений.

В микробиологических лабораториях противотуберкулезной службы используется схема, предусматривающая не менее чем 3-хкратное в течение 3 последовательных дней исследование мокроты или другого диагностического материала. У впервые выявленных больных (особенно с малыми клиническими формами процесса) желательно по возможности повысить кратность исследования до 4 - 5, так как подобная практика увеличивает число положительных результатов.

Эффективность бактериологических исследований непосредственно зависит от качества диагностического материала. В случаях, если в направлении на исследование указана мокрота, именно этот патологический материал должен быть доставлен и исследован в лаборатории. Материал в виде слюны не должен подменять мокроту.

Никакая хорошо работающая лаборатория не компенсирует плохого качества диагностического материала.

Флаконы для сбора материала

Материал для исследования на кислотоустойчивые микобактерии собирают в стерильные флаконы с удобными, плотно завинчивающимися крышками. Применение герметизированных флаконов преследует двоякую цель:

— предотвращение просачивания содержимого и загрязнения окружающей больного среды чрезвычайно стойкими к физическим воздействиям микобактериями;

— предохранение сохраняющегося во флаконе исследуемого материала от загрязнения широко распространенными вегетирующими в окружающей среде кислотоустойчивыми микобактериями.

В связи с этим флаконы для сбора качественного диагностического материала должны отвечать ряду обязательных требований:

— должны быть изготовлены из ударостойкого материала, не допускающего просачивания жидкости; желательно по возможности использовать флаконы одноразового применения, изготовленные из материала, легко поддающегося плавлению при автоклавировании или сжигании;

— должны иметь плотно завинчивающиеся или герметически закрывающиеся крышки;

— объем флаконов должен составлять 20 — 50 мл, что вполне достаточно для проведения всех видов исследований;

— флаконы должны иметь широкое отверстие для сбора мокроты (не менее 35 мм в диаметре), чтобы пациент мог легко сплевывать мокроту внутрь флакона, не подвергая загрязнению наружную поверхность;

— флаконы должны быть изготовлены из прозрачного материала, чтобы можно было оценить количество и качество собранной пробы, не открывая крышку;

— материал, из которого изготовлены флаконы, должен легко подвергаться маркировке и надежно сохранять ее на всем протяжении периода хранения, транспортировки и проведения исследования.

При отсутствии одноразовых контейнеров можно применять толстостенные флаконы из стекла (карманные плевательницы).

При многоразовом использовании флаконы стерилизуют в автоклаве, удаляют остатки содержимого, тщательно моют, помещают в них стеклянные бусы для гомогенизации мокроты и повторно стерилизуют.

Примененяя флаконы многоразового пользования, во избежание лабораторного загрязнения диагностического материала лаборатория должна постоянно контролировать качество мытья и стерилизации флаконов.

Правила сбора диагностического материала

Для получения оптимальных результатов при исследовании диагностического материала необходимо соблюдать следующие условия:

— сбор материала необходимо производить до начала химиотерапии, так как даже несколько дней применения лекарственной терапии может убить значительное количество кислотоустойчивых микобактерий или снизить их жизнеспособность и исказить результаты исследования;

—                  материал для исследования должен собираться рано утром сразу после подъема пациента;

—                  при исследовании мокроты желательно собрать не менее 3 проб утренней мокроты в течение 3 последовательных дней. Это существенно повышает результативность исследования;

—                  собранный материал необходимо как можно быстрее доставить в лабораторию; в случае невозможности немедленной доставки материал сохраняется в холодильнике при 4-10°С;

—      при перевозке материала необходимо особенно тщательно следить за сохранностью флаконов и правильностью их маркировки.

Материал взят из приказа министерства здравоохранения РФ №109 от 21 марта 2003 года «О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в РФ»

Рекомендации бактериологической лаборатории СОКПТД:

Как происходит сбор мокроты для бактериологического исследования образца мокроты?

1. Лечащий врач выдаёт направление на исследование мокроты, в котором указывает паспортные данные пациента и необходимую информацию для лаборатории (диагноз, цель исследования и т.п.).
2. Для сбора мокроты используются стерильные одноразовые пластиковые флаконы с плотно завинчивающимися крышками для предотвращения просачивания содержимого из флакона и предохранения исследуемого материала от загрязнения микроорганизмами из окружающей среды, которые выдаются при посещении врача-фтизиатра.
3. Флакон обязательно маркируется с указанием фамилии, имени и отчества пациента и указанием места сбора. Выданный флакон необходимо открывать только в момент забора мокроты!
4. Как правило, мокрота собирается утром натощак. Перед сдачей мокроты обязательно (!) провести гигиенические процедуры: почистить зубы, прополоскать зев и полость рта кипяченой водой, если есть зубные протезы, их необходимо снять, чтобы минимизировать риск контаминации материала микрофлорой, которая обитает в полости рта.
5. Сбор мокроты производится в специальной кашлевой кабине. В случае отсутствия таковой материал собирается пациентом в домашних условиях. Собранную дома мокроту необходимо как можно быстрее доставить для проведения исследования, а если это невозможно сделать, то допускается хранение материала в холодильнике при 4–10°С.
6. Одним из способов сбора мокроты является такой: необходимо сесть на стул напротив открытого окна. Сделать несколько глубоких вдохов и выдохов, а на последнем встать со стула, чтобы наполнить лёгкие воздухом и сразу же после этого с силой и резко вытолкнуть воздух из лёгких, чтобы диафрагма поджала лёгкие, что вызовет естественный кашель. Собирать необходимо только содержимое дыхательных путей!
7. При пло­хо отделяемой мокроте, накануне принять отхаркивающие средства, тёплое питьё. Мокрота собирается пациентом самостоятельно посред­ством глубокого откашливания. Необходимо собирать только мокроту, отделяющуюся при кашле, а не при отхаркивании!